Zweisporiger Nitrathelmling (MYCENA SILVAE-NIGRAE)

Hallo und guten Tag Hubi,

wie bitte ist es dir möglich bei der Vergrößerung 400x so „genau“ zu messen und warum misst du in Melzers Reagenz?

Eine gute Zeit

Gelbfieber & Co

Hallo Hubi,

die Teufelchen in 8a haben schon was, schöner Beitrag! So makroskopisch würds ja ganz gut passen.

LG Joe

als mikroskopisches nackerbatzl wie ich bin: die keule mit den zwei hornartigen auswüchsen oben. Teufelchen halt😁

Lg joe

Hallo Hubi

Auch hyalinartige Sporen lassen sich im Wasser gut ausmessen, man muss halt etwas mit der Blende bzw. Belichtung arbeiten. Ich lege immer zwei Deckplätchen auf mit Sporen -> 1x mit Wasser und 1x Melzer. Auch bei den Nitratriechenden Helmlinge gibt es einige Varianten. Schöne Dokumentation.

BG Andy

Hallo und guten Tag Hubi,

Zitat

…. In Melzer Reagenz habe ich die Sporen gemessen weil mir zugleich angezeigt wird ob sie hyalin sind oder nicht.

da muß ich nochmal einhaken.

Du färbst also mit Melzers Reagenz farblose durchsichtige also hyaline Sporen gelblich (wie auf dem Mikrobild dargestellt) um so zu sehen das die jetzt gelblichen Sporen, „farblos“ durchsichtig sprich hyalin sind ?!

Wäre schön von dir zu lesen.

Eine gute Zeit

Gelbfieber & Co

Hallo zusammen,

Melzers Reagenz hat einen großen Nachteil, es wirkt letal. Grund ist das enthaltene Chloralhydrat. Tote Strukturen sind meist nicht ideal bei der mikroskopischen Betrachtung, da sie oft nicht mehr den eigentlichen entsprechen. Es kann nach dem Absterben der Sporen zu Veränderungen in Größe, Inhalt etc. kommen.

Melzers Reagenz ist daher eine schlechte Wahl zur bloßen Kontrastverbesserung. Sinnvoll ist es natürlich bei Färbereaktionen, wie das Ornament von Russulales Sporen sichtbar zu machen. Und da es hierfür jeder nutzt, sind auch die Literaturangaben auf die toten Sporen bezogen.

Wenn man gerne eine Einfärbung mit Jod hätte, wäre Lugol‘sche Lösung eine bessere, nicht letale Alternative. Oder andere klassische Färbemittel (Kongo/H2O, Brilliantkresylblau,…) verwenden.

LG Thiemo

Hallo und guten Tag,

Thiemos Ausführung über Melzers Reagenz kann ich bestätigen.

Der Asco-Kenner Ingo W aus S hat vor vielen Jahren schon gesagt:

Zitat

….. In Melzers Reagenz ist Chloralhydrat enthalten, das ist ein Sofort-Totmacher.

Deswegen für Ascos (in meinen Augen auch für Basidios) nicht geeignet. Damit schrumpfen fast sämtliche Strukturen bis fast zur Unkenntlichkeit zusammen, taxonomisch relevante Merkmale gehen verloren. Ein Messen von vitalen Strukturen ist damit realistisch gar nicht möglich, ein Beurteilen von Inhalten reichlich verfälscht……

Füge ein FB an, das an Hand Gyromitra ancilis Sporen (in gleichem Maßstab dargestellt) zeigt, was Melzers und Baumwollblau „anrichten“ was Thiemo und Ingo auch schreiben.

Beim mikroskopieren mit Melzers Reagenz ist das komplette „Innenleben“ der Sporen verschwunden. Baumwollblau verformt die Sporen, macht sie deutlich schmaler. Beim mikroskopieren in Baralscher Lösung, habe ich nur eine geringe und zu vernachlässigende Maßabweichung festgestellt.

Mikroskopieren in Wasser ist aus vielen Gründen die 1. Wahl und wer glaubt in Wasser erreicht man keine belastbaren Ergebnisse betreff Sporenornament, der macht schlechte Präparate oder hat nicht geeignete Optik!

Frage mich warum bei der Pilzmikroskopie als Medium so viel Chemie eingesetzt wird – in Wasser ist es doch wesentlich zeitsparender, komfortabler, preiswerter …..

Oder ist es so das ….. „je bunter je besser“ ? Oder aber… habe mir das teure Zeug gekauft, weiss aber nicht so recht was ich damit machen soll, obendrein schon den Tisch mit dem ollen Baumwollblau versaut – nun wir es auch aufgebraucht ….?!

Eine gute Zeit

Gelbfieber & Co

Ergänzend noch die Abwandlung eines bekannten Spruchs von einem Bekannten Mykologen:

in vivo vertias - im Leben liegt die Wahrheit

LG Thiemo