ja sehr schön, ja da sieht man gut beides, inkrustierendes und intrazelluläres Pigment.
Die Vereine sind sehr unkompliziert. Zürich hat jeden Montag Bestimmungsabend. Einfach mal unangemeldet hingehen und unverbindlich schauen ob es dir Spass macht, wovon ich fast überzeugt bin. Alles weitere zeigt sich dann.
Gruss Raphael
Hallo Hubi
Bist du schon in einem Pilzverein? Ich frage, weil in deinem Profil nichts davon steht.
Wenn nein, wäre das dringend nötig. Im PV Zürich oder im PV Zug würdest du einige gute Mykologen kennenlernen, die können dir noch viel besser helfen als wir im Forum. Die kleineren Vereine in der Gegend kenne ich leider noch zu wenig, die sind halt vielfach mehr auf Speisepilze konzentriert.
Viele Grüsse aus dem Wallis
Raphael
Hallo Hubi
Der Begriff "Basalschnalle" war schon richtig (weil diese Schnallen an der Basidien-Basis sind). In dem Link von Andy ist einfach ein Bild, wo man sie sehr gut sieht.
Auf dem ersten Basidienbild bin ich nicht sicher, aber die drei anderen zeigen Schnallen. 
Beim zweiten sieht man dass die Basidie unten irgendwie schräg ist, mit einem Winkel in der Mitte.
Selbst wenn die Schnallen bei reifen Basidien abfallen, erkennt man an solchen Basidien dass es Schnallen geben muss.
Das Bild von der Hyphe ist zu undeutlich, kann eine Schnalle sein, ist mir aber eigentlich zu gross dafür.
Von welchem Fruchtkörperteil war das? Bei E. hirtipes dürfte es schwierig sein, an Hut und Stiel welche zu finden.
Da suchst du dir lieber ein anderes "Opfer" zum Üben.
Und das HDS-Bild: Ist noch zu undeutlich weil zu viele Zellschichten übereinander sind.
E. hirtipes hat nur in der Subkutis intrazelluläres Pigment, in der obersten Schicht nicht.
Um das nachzuweisen, halbierst du am besten einen Hut und machst einen senkrechten, möglichst feinen Schnitt mit einer frischen Rasierklinge nach der Hutmitte.
Dann vorsichtig quetschen, und wieder mit 400x mikroskopieren damit du ggf. schrittweise noch mehr quetschen kannst.
Das intrazelluläre Pigment muss man nicht lange suchen, einfach vorzugsweise am Rand vom Präparat schauen wo die Zellen weniger übereinander liegen.
Intrazelluläres Pigment sieht man bei schwacher Vergrösserung (100x oder 400x) besser als mit Immersion.
Gruss Raphael
Hallo Hubi
Eindeutige Schnallen sehe ich da noch nicht. Such mal an noch kleineren Basidiolen, da sind die Chancen am besten.
Gruss Raphael
Hallo Hubi
Ich schliesse mich Andy an, wenn das deine ersten Versuche sind, dann Respekt. Wirklich gute Arbeit.
Ich denke deine Bestimmung ist richtig. Ein Rötling mit diesem Habitus und Geruch im Frühling ist fast immer hirtipes.
Die seltenen Alternativen kommen aufgrund der Mikromerkmale nicht in Frage.
Zwei Tipps von mir:
HDS:
Das inkrustierte Pigment sieht man sehr gut auf deinen Bildern. Das andere kann gut intrazelluläres Pigment sein, E. hirtipes hat beides.
Ich mikroskopiere die HDS von Rötlingen immer in 3% KOH, wenn es um die Pigmentierung geht.
Hier das intrazelluläre Pigment in KOH:
Schnallen:
Das ist bei Rötlingen immer schwierig. Am einfachsten findest du sie an den Stielhyphen, weil es da recht einfach ist eine dünne Schicht von der Oberfläche zu entnehmen.
Aber es gibt Arten, die z.B. nur an den Basidien Schnallen haben, sonst nicht. Oder umgekehrt. Das würde ich aber erst gezielt checken, wenn es bei der Bestimmung drauf ankommt.
E. hirtipes sollte an den Basidien welche haben, sonst nur selten.
Auf deinen Bildern sehe noch keine Schnalle. Um sie zu finden, gehst du am besten so vor:
- Einen möglichst jungen Fruchtkörper wählen
- Ein nicht zu kleines Lamellenfragment nehmen und auf dem Objektträger gründlich zerkleinern (nicht quetschen). Das geht mit zwei Nadeln oder einer Pinzette ganz gut.
- In Kongorot einfärben. Präparat nur so weit quetschen, dass es möglich wenig Luftblasen hat.
- Am Anfang mit 400x oder 600x suchen, nicht gleich mit 1000x.
- Nach unreifen Basidien (Basidiolen, meist keulenförmig) suchen, die möglichst frei herumschwimmen. Wenn du keine findest, vorsichtig schrittweise etwas mehr quetschen.
Dann müsstest du mit etwas Geduld Schnallen an der Basidiolenbasis finden. Das ist Übungssache.
Hauptproblem: Wenn man trotz aller Mühe keine findet, ist das kein Beweis dass es keine gibt.
So irgendwie könnte das dann aussehen (Schnalle von E. hirtipes):
Gruss Raphael
Hallo zusammen
Ich würde die Finger davon lassen, sonst kauft ihr euch in 2-3 Jahren nochmal ein besseres. Für den doppelten Preis bekommt ihr ein deutlich besseres Mikroskop mit Fototubus.
Gruss Raphael
Hallo Jens,
Ich habe für den Zweck Winterwanderschuhe, die erfüllen eine angemessene (aber nicht unbegrenzte) Wasserdichtigkeit, wann man sie regelmässig imprägniert.
Zudem sind sie gerade bei kühlen Herbstausflügen auch wärmer als normale Wanderschuhe.
Eine bestimmte Marke kann ich nicht empfehlen, hängt von deinen Füssen ab, muss aber zugeben dass ich auch welche von L... habe.
Gruss Raphael
Hallo Franz
Ich sehe einen kleinen, braunen Pilz. Ohne Bilder und Messungen von Sporen und Zystiden wird das nichts.
Tubaria kann gut sein, aber alles weitere ist Spekulation. Die Jahreszeit legt T. furfuracea (= hiemalis) nahe, schliesst aber andere Arten nicht aus.
Gruss Raphael
Hallo Codo
Die Lamellenschneide hat wohl wirklich keine Zystiden. Diese müssten sich in der Form deutlich von den Basidiolen unterscheiden, was hier nicht der Fall ist.
Das mit den Schnallen ist schwierig, vor allem auf Fotos. So offensichtlich sehe ich jetzt keine, nur das hier könnte vielleicht eine sein:
Ist aber eigentlich nicht mehr so entscheidend.
Keine Zystiden, Lamellentrama passt auch zu E. sericeum. Ich sehe nichts was dagegen spricht.
Gruss Raphael
Hallo Rigo
Also auf das erste ist ein prächtiges Bild von einer Basidiole mit Schnalle. Dieser Buckel rechts. So gut sieht man das selten.
Auf dem HDS-Bild sieht man feine Inkrustationen, das passt auch.
Also ich denke es stimmt alles für E. hirtipes
Gruss Raphael
Hallo Rigo
E. hirtipes ist hier gut möglich. Allerdings scheint er Frost abbekommen zu haben, deshalb bleibt es wohl bei einer Vermutung.
Ist eher eine Frühlings-Art, kann aber nach Literatur auch im Herbst vorkommen.
Der sollte so einen komischen gurkig-tranigen Geruch haben. Hast du den bemerkt?
Was du noch machen könntest:
a) Weiter nach Schnallen an den Basidiolen suchen 
Hier eine Schnalle von einer hirtipes-Kollektion im Frühjahr.
b) Pigmentuntersuchung in der HDS ist bei Rötlingen Pflicht.
Am besten in KOH, da müsstest du bei E. hirtipes an einigen (nicht allen) Hyphen solche Strukturen finden:
Deine Zystidenbilder passen sehr gut, hier zum Vergleich:
Gruss Raphael
Hallo Codo
Na das ist doch schon mal was. Einige Merkmale kann man auf den Mikrobildern erkennen:
- Pigment stark inkrustierend, wie Rigo bereits festgestellt hat
- Einige viersporige Basidien sieht man
- Die Bilder der HDS und des Stiels zeigen keine offensichtlichen Schnallen (was aber nicht zwingend bedeutet dass es keine gibt).
Andere Sachen fehlen aber noch:
Bei der Lamellenschneide bin ich mir nicht sicher, ob diese rundlich-keuligen Zellen Zystiden oder Basidiolen sind.
Solche Strukturen bei Rötlingen am besten in Kongorot mikroskopieren (wenn du welches hast).
Hier ein Beispiel für eine heterogene Lamellenschneide (Basidien und Cheilozystiden gemischt). [E. magnaltitudinis]
Die Schnallensuche an den Basidiolen ist dir wohl auch nicht gegückt (dafür kannst du nichts, das ist wirklich eine sehr mühsame Arbeit).
Um das sicher zu entscheiden, bräuchtest du ein Präparat das irgendwie so aussieht:
Hier mit Schnalle (nur an der Basidiole, bei der fast reifen Basidie sieht man nichts mehr) [E. bipelle]
Hier ohne Schnallen [E. spec. unbestimmt]
Lamellentrama: Habe ich vergessen zu erwähnen, da sollte man auch die Zellen grob messen.
Es gibt Rötlinge mit kurzen, dicken Hyphen im Lamellentrama und solche mit langen, schlanken Hyphen, so wie hier:
Lamellentrama von E. sericeum mit Schnalle
Nach allem was ich bisher gesehen habe, scheint mir aber eigentlich dein ursprünglicher Vorschlag sehr passend.
Für E. sericeum sprechen neben der Makroskopie die Sporen, die inkrustierte HDS und die (vermutlich) fehlenden Cheilozystiden.
Die Schnallen sind tückisch bei der Art. In der HDS und am Stiel, wo man sie gut finden würde, gibt es fast keine.
Aber im Lamellentrama und an den Basidiolen müsstest du mit etwas Geduld welche finden.
Last but not least: Die Art ist sehr häufig, ähnliche Arten die noch in Frage kommen sind sehr selten und kaum bekannt.
Hier zum Vergleich:
Entoloma sericeum
Sporen fast isodiametrisch und etwas abgerundeten Ecken
HDS inkrustiert (schlechtes Bild)
Ich würde deine Kollektion mit gutem Gewissen als E. sericeum ablegen. Eine kleine Restunsicherheit ist bei Rötlingen kaum zu vermeiden.
Gruss Raphael
Raphael, was wäre denn geeignete Rötlings-Spezialliteratur?
Hallo Sabine
Das umfassendste Werk sind sicher die beiden Bände von Noordeloos (Fungi europaei 5/5a).
Der zweite Band enthält einen recht guten Schlüssel. Andere umfangreiche Schlüssel gibt es im Gröger und der Funga Nordica.
Der Schlüssel bei Gröger passt mir persönlich am besten, aber es ist halt nur ein Schlüssel, ohne ergänzende Nachschlagewerke kommt man da nicht zurecht.
Bei Ludwig sind viele Arten abgebildet, aber ohne Schlüssel, nur damit ist es schwierig zu bestimmen wenn man noch keinen konkreten Kandidaten im Auge hat.
Und dann gibt es noch zu vielen Rötlingsgruppen Fachartikel, die man mühsam zusammensuchen muss.
Gruss Raphael
Hallo Codo
Zu braunen, hygrophanen Rötlingen sage ich nichts ohne Anwalt.
Das Mikroskopieren von Rötlingen ist viel Arbeit. Ich kann ja mal zusammenfassen was mir gerade einfällt.
Sporen:
Ist ja schon gemacht, ausmessen und Koeffizient rechnen. Hier ist der Koeffizient plus/minus 1 (isodiametrisch).
Sporenform und Anzahl Ecken. Es gibt auch wenige Arten mit eher höckerig-buckligen, kreuz- oder sternförmigen oder kubischen Sporen.
Cheilozystiden (Lamellenschneide):
Erstmal schauen ob es welche gibt (gründlich suchen). Wenn es welche gibt, Form dokumentieren (Fotos) und ausmessen.
Basidien:
Wieviele Sterigmen? Meistens sind es 4, wenn es mehrheitlich nur 2 sind ist es viel einfacher, da kommen nur wenige Arten in Frage.
Lamellentrama:
Braucht man oft nicht, wenn doch sollte man einen Lamellenschnitt machen. Form und Abmessungen der Zellen sind wichtig.
Man kann da auch ganz gut nach Schnallen suchen.
Schnallen:
Überall im Fruchtkörper muss man nach Schnallen suchen. Das ist der schwierigste Teil.
Sehr wichtig ist die Basidienbasis. Am ehesten findet man Schnallen an eher jungen Fruchtkörpern und unreifen Basidien (Basidiolen).
Präpariertechnik: ein kleines Lamellenfragment auf dem Objektträger mit zwei Nadeln oder einer Pinzette zerkleinern. Dann nur wenig quetschen.
Für die Schnallensuche muss man oft viel Geduld haben. Wenn es welche gibt ist der Fall klar.
Aber wenn man keine findet ist man oft gezwungen sehr lange zu suchen, weil längst nicht jede Basidiole Schnallen hat.
Im Zweifel also erstmal im Schlüssel schauen, ob das Merkmal für die Bestimmung entscheidend ist.
In der HDS und an den Stielhyphen muss man dann auch noch Schnallen suchen. da ist es aber meistens einfacher.
Und es gibt Arten, wo nicht alle Fruchtkörper-Teile Schnallen tragen.
HDS:
Pigment untersuchen (in KOH oder Wasser). Meistens stehen intrazellulär oder inkrustiert zur Wahl.
Struktur der HDS. Liegende Hyphen? Trichodermal, also aufsteigende, dicke Endzellen? Usw.
Die Struktur kann auch in der Hutmitte anders sein als am Rand.
Für die Untersuchung muss man einen senkrechten, feinen Schnitt machen, Übungssache.
In Einzelfällen gibt es noch weitere Merkmale, die man aber nicht unbedingt vorsorglich prüfen muss.
Fazit: Auch mit Mikroskop sehr schwierig, aber sehr gute Übungsgattung.
Und: Man braucht gute Spezialliteratur, mit den allgemeinen Standard-Floren kann man viele Arten nicht sicher bestimmen.
So, es ist spät, ich habe sicher etwas vergessen. Bitte nach Belieben ergänzen/korrigieren.
Gruss Raphael
Hallo zusammen
Inzwischen sind die getrockneten Pilze bei mir eingetroffen. Hier zwei Mikrobilder:
Sporen sehr klein, etwa 5-6 x 3-4 µm
Cheilozystiden bauchig bis breit spindelförmig
Fazit: Ihr lagt alle richtig, es ist Psathyrella piluliformis.
Geschlüsselt nach Örstadius 2015. Mit so kleinen Sporen kann man da die Auswahl stark eingrenzen, es kommen nur zwei Arten in Frage:
- Ps. piluliformis, bevorzugt Laubholz, Geruch unauffällig
- Ps. fragrans, bevorzugt Nadelholz, Geruch meist auffallend süss
Einen auffälligen Geruch hättet ihr sicher erwähnt, damit scheint mir die zweite Alternative sehr unwahrscheinlich.
Schade, dass es nichts besonderes war...
Gruss Raphael
Hallo Andy
Sehr sehr schön... ob es nun wirklich diese Art ist kann man so nicht sagen, aber gut möglich.
Ist dein Mikroskop schon auf der Geschenkli-Liste für Weihnachten?
Rötlinge eignen sich nämlich hervorragend als Übungsobjekt, da gibt es sehr viel zu sehen. Geht auch getrocknet sehr gut.
Gruss Raphael
Hallo Andy
Lieber trocknen, damit da nichts gammelig wird.
Gruss Raphael
Hallo Schupfi
Ganz ehrlich, keine Ahnung
Ich habe dieses Jahr praktisch keine Psathyrellas gefunden und habe einfach Lust drauf eine zu sezieren (sofern es wirklich eine ist).
Gut möglich dass es am Ende doch Ps. piluliformis ist.
Gruss Raphael
Hallo Andy bzw. Jens
So richtig überzeugt bin ich auch nicht dass es eine Psathyrella ist.
Hier gab es inzwischen Frost, die letzten Pilze sind nun Leichen. Wenn du sie noch hast, kannst du mir sie schicken, die sehen interessant aus.
Gruss Raphael
Hallo Murmel
Bist du sicher dass das ein Braunsporer ist? Son spontan sieht der eher wie einer der braunen Ritterlinge aus.
Gruss Raphael
Hallo zusammen
Das sind fast sicher Erdritterlinge.
Die sollen angeblich dieselben Stoffe enthalten, die beim Grünling zu Vergiftungen geführt haben. Also nix zum Essen.
Gruss Raphael
Doch, das Internet kennt den:
https://www.123pilzsuche.de/daten/details/RoetlicherGall.htm
Gruss Raphael
Vielen Dank!
Die Lamellen sind beige.
Ich habe ehrlich gesagt noch nie die Lamellenfarbe von sehr jungen Igel-Wulstlingen überprüft.
Gut möglich, dass sich der typische grünliche Farbton erst später entwickelt.
Gruss Raphael
Hallo Laurens
Der Pilz ist noch "minderjährig", daher schwer zu sagen.
Ich könnte mir aber einen Igel-Wulstling (Amanita echinocephala) vorstellen.
Haben die Lamellen einen Grünton? Das ist auf den Kunstlicht-Bildern schwer zu erkennen.
Gruss Raphael
